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HRbio™ qPCR SYBR® Green Master Mix (No Rox)

HRF0031 1ml ¥150; HRF0032 5ml ¥468; HRF0033 50ml ¥4680

HRbio™ qPCR SYBR Green Master Mix (No Rox) 是 2×实时定量 PCR 扩增的预混合溶液。Mix中含有热启动 HRbio™ DNA Polymerase、SYBR Green I、dNTPs、Mg2+
功能特点
规格参数
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功能特点

产品描述

HRbio™ qPCR SYBR Green Master Mix (No Rox) 是 2×实时定量 PCR 扩增的预混合溶液。Mix中含有热启动 HRbio™ DNA Polymerase、SYBR Green I、dNTPs、Mg2+。使用时仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量 PCR,大大简化操作过程,降低污染几率。

本品采用的 DNA 聚合酶配体可以随温度变化实时调节 DNA 聚合酶活性。配方添加了有效抑制非特异性 PCR 扩增的因子和提升 PCR 反应扩增效率的因子,使定量 PCR 可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。


适用机型

Bio-Rad: CFX96, CFX384, iCycler iQ, iQ5, MyiQ, MiniOpticon, Opticon, Opticon 2, Chromo4;

Eppendorf: Mastercycler ep realplex, realplex 2 s;

Qiagen: Corbett Rotor-Gene Q, Rotor-Gene 3000, Rotor-Gene 6000;

Roche Applied Science: LightCycler 480, LightCycler 2.0; Lightcycler 96;

Thermo Scientific: PikoReal Cycler; Cepheid: SmartCycler; Illumina: Eco qPCR.


运输和保存方法

冰袋运输。-20℃保存,有效期18个月。

本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料 SYBR Green I,保存或配制反应体系时需避免强光照射。


注意事项

  • 推荐使用本公司 cDNA 合成试剂盒,以有效去除 RNA样品中残留的基因组。
  • 解冻后 Master Mix 可能出现絮状物质,4℃放置并上下颠倒混匀至溶液澄清,不影响试剂性能。
  • 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
  • 本产品仅作科研用途!

引物设计指南

1. 推荐引物长度25 bp 左右。扩增产物长度 150 bp 为佳,可以在 100 bp-300 bp 内选择。

2. 正向引物和反向引物的 Tm 值相差不宜超过 2℃。引物 Tm 值 60℃-65℃为佳。

3. 引物碱基分布要均匀,避免出现连续的 4 个相同碱基,GC 含量控制在 50%左右。3’端最后一个碱基最好为 G 或 C。

4. 引物内部或者正反两条引物间最好避免出现有 3 个碱基以上的互补序列。

5. 引物特异性需要用 NCBI BLAST 程序进行核对。避免引物 3’端有 2 个碱基以上的非特异性互补。

6. 设计完成的引物需要进行扩增效率的检测,只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。


实验案例

实验案例图1

实验案例图2

规格参数

产品信息

产品名称 产品编号 规格
HRbio™ qPCR SYBR Green Master Mix (No Rox) HRF0031 1 mL
HRF0032 5×1 mL
HRF0033 50×1 mL

反应体系(推荐冰上配制)

组分 体积(μL) 体积(μL) 终浓度
HRbio™ qPCR SYBR Green Master Mix (No Rox) 25 10
Forward Primer (10 μM) 1 0.4 0.2 μM
Reverse Primer (10 μM) 1 0.4 0.2 μM
模板 DNA X X -
无菌超纯水 To 50 To 20 -

【注】:使用前务必充分混匀,避免剧烈震荡产生过多气泡。

a) 引物浓度:通常引物终浓度为0.2 μM,也可以根据情况在 0.1-1.0 μM 之间进行调整。

b) 模板浓度:如模板类型为未稀释 cDNA 原液,使用体积不应超过 qPCR 反应总体积的 1/10。

c) 模板稀释:cDNA 原液建议 5-10 倍稀释,最佳模板加入量以扩增得到的 CT 值在 20-30 个循环为好。

d) 反应体系:推荐使用20 μL 或 50 μL,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。

e) 体系配制:请于超净工作台内配制,并使用无核酸酶残留的枪头、反应管;推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染和气溶胶污染。


扩增程序(两步法)

循环步骤 温度 时间 循环数
预变性 95℃ 5 min 1
变性 95℃ 10 sec 40
退火/延伸 60℃ 30 sec★
熔解曲线阶段 仪器默认设置 1

扩增程序(三步法)

循环步骤 温度 时间 循环数
预变性 95℃ 5 min 1
变性 95℃ 10 sec 40
退火 55-60℃ 20 sec
延伸 72℃ 20 sec★
熔解曲线阶段 仪器默认设置 1

【注】高特异性可选择两步法,高效率扩增可选择三步法。

a) 预变性时间:根据不同模板和引物的具体情况可适当缩短至 2 min。

b) 退火温度和时间:请根据引物和目的基因的长度进行调整。

c) 荧光信号采集(★):请按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置,几种常见仪器的时间设定如下:
30sec 以上: Applied Biosystems: StepOne, StepOne Plus, 7500 Fast;Roche Applied Science: LightCycler 480;Bio-Rad: CFX96
31sec 以上: Applied Biosystems: 7300
34sec 以上: Applied Biosystems: 7500

d) 熔解曲线:通常情况下可以使用仪器默认程序。


结果分析

定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。

1)扩增曲线:
标准扩增曲线为 S 型。
Ct 值落在 20-30 之间时,定量分析最准确;
Ct 值小于 10,需要将稀释模板后,重新进行实验;
Ct 值介于 30-35 之间时,需要提高模板浓度,或者增大反应体系的体积,以提高扩增效率,保证结果分析的准确性;
Ct 值大于 35 时,检测结果无法定量分析基因的表达量,但可用于定性分析。

2)熔解曲线:
熔解曲线单峰,表明反应特异性好可以进行定量结果分析;若熔解曲线出现双峰或者多峰,则不能进行定量分析。熔解曲线出现双峰,需要通过 DNA 琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。
如果是引物二聚体,建议降低引物浓度,或者重新设计扩增效率高的引物。
如果是非特异性扩增,请提高退火温度,或者重新设计更高特异性的引物。

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以下是与本产品相关的资料:

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